Bureaucrates, Administrateurs, writer
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Idéalement on utilisera une [https://www.psychoactif.org/forum/viewtopic.php?id=66119 autoclave], [https://cultiver-les-champignons.com/hotte-a-flux-laminaire/ un flux laminaire] ou un bec bunsen, ou encore une [https://www.psychoactif.org/forum/2023/05/02/Tuto-Fabriquer-une-Still-Air-Box-boite-pour-travail-sterile_70090_1.html#divx Glove box (Still Air Box)] | Idéalement on utilisera une [https://www.psychoactif.org/forum/viewtopic.php?id=66119 autoclave], [https://cultiver-les-champignons.com/hotte-a-flux-laminaire/ un flux laminaire] ou un bec bunsen, ou encore une [https://www.psychoactif.org/forum/2023/05/02/Tuto-Fabriquer-une-Still-Air-Box-boite-pour-travail-sterile_70090_1.html#divx Glove box (Still Air Box)] | ||
==Réaliser une Empreinte de spores== | ==[http://champignonscomestibles.com/faire-une-empreinte-de-spores/ Réaliser une Empreinte de spores]== | ||
Matériel nécessaire | [[Image:Empreinte-de-spore11.jpg|thumb|Empreinte de spore]] | ||
===Matériel nécessaire=== | |||
* 2 Feuilles d’aluminium découpées 10X10 par empreinte de spores | * 2 Feuilles d’aluminium découpées 10X10 par empreinte de spores | ||
| Ligne 39 : | Ligne 42 : | ||
Conservation dans un endroit noir et sec (type boite à biscuit ou bas de frigo avec un sachet de silice) quasiment impérissable. | Conservation dans un endroit noir et sec (type boite à biscuit ou bas de frigo avec un sachet de silice) quasiment impérissable. | ||
==[http://champignonscomestibles.com/comment-faire-une-seringue-de-spores#:~:text=Pour%20faire%20une%20seringue%20de,de%20l'empreinte%20de%20spores./ Réaliser une Seringue de spores]== | |||
== | ===Matériel nécessaire=== | ||
Matériel nécessaire | |||
* Scalpel ou couteau | * Scalpel ou couteau | ||
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Étapes pour réaliser la seringue | ===Étapes pour réaliser la seringue=== | ||
* Verser l’eau stérile dans le shooter | * Verser l’eau stérile dans le shooter | ||
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Conservation : 1 an max | Conservation : 1 an max | ||
==[https://www.psychoactif.org/forum/2020/04/24/Tutoriel-preparer-Culture-Liquide_51803_1.html#divx/ Réaliser une Culture Liquide]== | |||
[[Image:Culture_liquide.jpg|thumb|culture liquide : innoculation des pots]] | |||
Avantages par rapport à la seringue de spores : | Avantages par rapport à la seringue de spores : | ||
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* Création d’un mycélyum mono spore possible (à partir d’un seul champignon/clone) contrairement à une seringue qui produira une culture multispores (gain de productivité si objectif rentabilité) | * Création d’un mycélyum mono spore possible (à partir d’un seul champignon/clone) contrairement à une seringue qui produira une culture multispores (gain de productivité si objectif rentabilité) | ||
Matériel nécessaire | ===Matériel nécessaire=== | ||
* Sirop de glucose (grenadine, etc…) | * Sirop de glucose (grenadine, etc…) | ||
* Bocaux pour culture liquide | * Bocaux pour culture liquide | ||
* Fait tout ou autoclave | * Fait tout ou autoclave | ||
* Morceaux de verre | * Morceaux de verre | ||
* 4 à 7% de glucides (en volume) dans de l'eau stérile mais pas déminéralisée. | |||
4 à 7% de glucides (en volume) dans de l'eau stérile mais pas déminéralisée. | |||
Mesurer les dosages : bocal d’1L = 96 cl d’eau + 4 cl de sirop | Mesurer les dosages : bocal d’1L = 96 cl d’eau + 4 cl de sirop | ||
4 cl de sirop égale 8 cuillères à café égale environ 3 cuillères à soupe | 4 cl de sirop égale 8 cuillères à café égale environ 3 cuillères à soupe | ||
* Mélanger l’eau, le glucose et les morceaux de verre dans le bocal prévu pour la CL. Les morceaux de verre serviront plus tard pour « casser » le mycélium et ainsi accélérer sa croissance. | |||
* Recouvrir chaque trou avec deux couches de ruban micropore et recouvrir le couvercle avec 2 feuilles d'aluminium. | * Recouvrir chaque trou avec deux couches de ruban micropore et recouvrir le couvercle avec 2 feuilles d'aluminium. | ||
| Ligne 88 : | Ligne 88 : | ||
Étapes d’inoculation pour créer le mycélium dans la CL | ===Étapes d’inoculation pour créer le mycélium dans la CL=== | ||
Pour ce faire, plusieurs possibilités : | Pour ce faire, plusieurs possibilités : | ||
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Etapes Finales | ===Etapes Finales=== | ||
* Mettre les pots dans un incubateur à la température voulue pour la variété cultivée (26°C pour les sclérotes - Ps. Mexicana et 28°C pour les Ps.Cubensis) | * Mettre les pots dans un incubateur à la température voulue pour la variété cultivée (26°C pour les sclérotes - Ps. Mexicana et 28°C pour les Ps.Cubensis) | ||
* Mélanger la CL avec un mouvement de rotation 2 ou 3x par jour. | * Mélanger la CL avec un mouvement de rotation 2 ou 3x par jour. | ||
| Ligne 104 : | Ligne 104 : | ||
Pour plus d'info voir le tutoriel [https://www.psychoactif.org/forum/2020/04/24/Tutoriel-preparer-Culture-Liquide_51803_1.html#divx Réaliser une culture liquide] | Pour plus d'info voir le tutoriel [https://www.psychoactif.org/forum/2020/04/24/Tutoriel-preparer-Culture-Liquide_51803_1.html#divx Réaliser une culture liquide] | ||
==[https://www.psychoactif.org/forum/t34442-p1-Tuto-Culture-Champignons-Mexicains-Ecuador-Methode-PF-tek-mai.html#divx/ Réaliser une PF-Tek]== | |||
===Matériel nécessaire=== | |||
* Seringue de spores ou Cl | |||
* Bocaux verres | |||
* Vermiculite | |||
* Farine de riz complet bio | |||
* Fait tout ou auto clave | |||
* Ruban micropore | |||
===Etapes pour réaliser la PF-Tek=== | |||
* Calculer les dosages : | |||
Le ratio pour le mélange est : - 4 parts de vermiculite. -1.5 parts de farine. -1.5 parts d’eau. | |||
Pour un pot d’un litre remplit trois quart = 750g / 7 = 107g la part environ | |||
Soit : | |||
Vermiculite = 4X107g = 428 grammes | |||
Farine = 1.5X107g = 160 grammes | |||
Eau = 1.5X107g = 160 grammes = 16 cl | |||
* Versez l'eau doucement sur la vermiculite tout en mélangeant avec une cuillère (attention à ne pas mettre plus d'eau que la vermiculite ne puisse absorber). | |||
* Ajouter la farine et mélanger afin obtenir un mélange bien homogène. | |||
* Remplir les bocaux | |||
Faire attention à ne pas laisser de substrat sur le bord supérieur du bocal. | |||
* Rajoutez le dernier centimètre libre du pot avec de la vermiculite sèche puis refermer le pot. | |||
* Recouvrir avec deux couches de ruban micropore et recouvrir le couvercle avec 2 feuilles d'aluminium. | |||
* A l’auto-clave, porter à ébulition pendant 90 mn ou 3h30 au fait-tout. | |||
* Attendre le refroidissement des pots. | |||
Si possible pratiquer l’étape suivante devant un flux laminaire ou bien flamme bunsen | |||
* Retirer l’alu | |||
* Appliquer de l’alcool sur l’aiguille de la seringue, puis chauffer à la flamme (A prariquer entre chaque inoculation de pot !!!). | |||
* Inoculer la seringue de spore ou culture liquide environ 2 ml dans chaque pot. | |||
* Replacer du ruban multipore et l’alu | |||
* Placer en incubateur à 28 degrés | |||
Au bout de quelques jours on voit apparaître le mycélium. | |||
Lorsque celui-ci à contaminé entre 30% a 50% du pot (environ 10j), le secouer. | |||
Une fois 100% contaminé, entreposer les bocaux à une température entre 21 et 23°C. | |||
Ne pas exposer les bocaux à la lumière directe du soleil | |||
[https://www.psychoactif.org/forum/t34442-p1-Tuto-Culture-Champignons-Mexicains-Ecuador-Methode-PF-tek-mai.html#divx Tutoriel complet pour réaliser un PF tek] | |||
==[https://www.psychoactif.org/forum/viewtopic.php?id=35726/ Réaliser une culture sur Grains de Seigle] (avant Monotube)== | |||
===Matériel nécessaire=== | |||
* Seringue de spores ou de Culture liquide | |||
* Grains de seigle bio | |||
* Bocaux verre | |||
* Passoire | |||
* Fait tout, dans l’idéal grosse autoclave | |||
* Gypse, platre ou sulfate de calcium déshydraté | |||
* Café | |||
===Etapes pour réaliser une culture sur Grains avant Monotube=== | |||
* Mesurer le volume nécessaire de grains | |||
Pour un pot d’un litre remplit trois quart = 750g/2.5 (gonflement du grain sec) = 300 g de grains secs par bocal | |||
Exemple : 300g X 6 bocaux = 1800 gr ou 1.8 kg ou 1.8 l | |||
300 X 4 bocaux = 1200 gr ou 1.2kg | |||
* Rincer plusieurs fois les grains de seigle à la passoire | |||
* Placer les Grains dans le fait tout | |||
3 volumes de mélange liquide (eau chaude/café) pour un volume de grains | |||
Exemple : 1.8l X 3 = 5.4 l | |||
* Recouvrir les grains avec le mélange liquide (eau café) | |||
* Ajouter cuillères de gypse (plâtre, - CaSO4 2H2O.) Environ 1 cuillère à soupe pour 2kg de grains | |||
* Porter à ébullition et couper le feu. | |||
* Laisser tremper 4 a 12h | |||
* Idéalement, changer l'eau pour la cuisson finale de 10 minutes afin de virer l'amidon (les grains colleront beaucoup moins et seront plus faciles à sécher juste après la cuisson). | |||
* Porter à ébullition 10 mn pas plus afin de ne pas faire éclater les grains | |||
* Verser le grain bouillant dans les passoires | |||
* Passer de l'eau très chaude dessus pour enlever l'excès de gypse et de café afin que les grains ne collent pas une fois secs en surface | |||
* Faire sécher sur une serviette | |||
* Rajouter une bonne grosse cuillère de gypse aux grains | |||
Avant de remplir les bocaux, le seigle doit être froid et "sec" en surface, au toucher. | |||
* Remplis les bocaux aux 3/4 car il faudra "casser" le pour accélérer la colonisation et vérifier qu'il n'y a pas de contaminations internes | |||
Faire attention à ne pas laisser de substrat sur le bord supérieur du bocal. | |||
* Recouvrir avec deux couches de ruban micropore et recouvrir le couvercle avec 2 feuilles d'aluminium.. | |||
* Porter à ébulition pendant 90 mn à l’autoclave ou 3h30 au fait-tout. | |||
* Attendre le refroidissement des pots. | |||
Si possible pratiquer l’étape suivante devant un flux laminaire ou bien flamme bunsen | |||
* Retirer l’alu | |||
* Appliquer de l’alcool sur l’aiguille de la seringue, puis chauffer à la flamme (A pratiquer entre chaque inoculation de pot !). | |||
* Inoculer la seringue de spore ou culture liquide environ 2 ml dans chaque pot. | |||
* Replacer le scotch multipore et l’alu | |||
* Placer en incubateur à 28 degrés | |||
Au bout de quelques jours on voit apparaître le mycélium. | |||
Lorsque celui-ci à contaminé entre 30% a 50% du pot (normalement après 10j), le secouer. | |||
Une fois 100% contaminé, entreposer les bocaux à une température normale (à peu près à 21°C). | |||
Ne pas exposer les bocaux à la lumière directe du soleil | |||
[https://www.psychoactif.org/forum/viewtopic.php?id=35726 Voir un exemple plus complet de tutoriel pour réaliser une culture sur Grains] | |||
==[https://www.psychoactif.org/forum/2023/06/07/Tutoriel-MONOTUB-tout-pour-culture-champi_70657_1.html#divx/ Préparation du Monotube] [https://www.psychoactif.org/forum/viewtopic.php?id=47404/ et Substract]== | |||
===Matériel nécessaire=== | |||
* Une boite en plastique transparente | |||
* une perceuse | |||
* Un sac poubelle ou autre plastique opaque | |||
* du scotch de peintre | |||
* du scotch micropore | |||
* 2 part de substrat humidifié pasteurisé ou stérilisé du grain | |||
* 1 part de mycelium sur grains | |||
===Fabrication du Monotub=== | |||
[[Image:Monotube.jpg|thumb|un monotube fabriqué]] | |||
* Marquer l’emplacement des trous. | |||
Une ligne de petit trous sur le pourtour de la boite, 2 cm au dessus de la surface du substrat. Les grands trous se situeront en haut de la boite. Si votre boite est grande, faites des trous à chaque coin supérieur de chaque face, donc 8 au total. Si vous avex une petite boite, faites des trous sur seulement les deux faces les plus éloignées,donc 4 au total. | |||
* Percer les trous | |||
===Préparation du susbtrat=== | |||
Il faut humidifier votre substrat avec la bonne quantité d’eau et ensuite le stériliser, ou les deux en même temps. | |||
Si vous avez 1kg de mélange fibre coco vermiculite (50/50) que vous souhaitez humidifer à 75%. Il faut rajouter 3kg d'eau, pour un total de 4kg de substrat humidifié. | |||
Vous pouvez ensuite stériliser ce mélange a l’autoclave minute dans un sac résistant à la chaleur. L'autre solution est de verser tout simplement de l'eau bouillante sur le substrat plaçé dans un récipient préalablement nettoyé à l'alcool pour le pasteurisé. | |||
===Préparation du monotube=== | |||
* Nettoyez le monotub. L'intérieur et l'extérieur, deux fois d'affilé, sans oublier le moindre recoin, ainsi que le couvercle. | |||
* Munissez vous du scotch de peintre et couvrez par l'extérieur tout les trous du monotub (les grands et les petits). | |||
* Découpez le sacs poubelle afin de recouvrir le fond du monotub avec une seule couche de plastique | |||
* Placez le plastique noir dans le fond du monotub. | |||
Procéder au Casing | |||
* une couche de substrat dans le fond de la boite sur le plastique noir. | |||
* une couche de mycélium sur grain. | |||
Continuez comme cela jusqu'à épuisement des deux ou jusqu'à ce que vous arriviez au niveau des trous. | |||
* Mélangez bien le tout avec vos mains pour répartir au maximum les grains dans le substrat. | |||
* Égalisez la surface puis refermez la boite. | |||
Placez la en incubation entre 26 et 28 degrés | |||
N'ouvrez pas la boite pendant au moins 2 semaines ou jusqu'à colonisation complète du substrat. C'est à dire jusqu'à ce que vous voyiez une couche de mycélium blanc recouvrant la surface. | |||
===Fructification=== | |||
* Placez la boite à la lumière indirecte du soleil. | |||
* Retirez le scotch de peintre. | |||
* Remplacez le par le bandage microporeux. | |||
Vous verrez apparaître les premiers primordia après 7 à 14 jours. Les champignons mature quelques jours plus tard. | |||
Tutoriels pour [https://www.psychoactif.org/forum/2023/06/07/Tutoriel-MONOTUB-tout-pour-culture-champi_70657_1.html#divx fabrication du monotube]et sur [https://www.psychoactif.org/forum/2023/06/07/Tutoriel-MONOTUB-tout-pour-culture-champi_70657_1.html#divx les substrats] | |||